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癌症疫苗递送载体全景:从LNP到VLP,不止一条路

发布时间:2026年09月05日 07:02 | 浏览次数:5
癌症疫苗 mRNA癌症疫苗 LNP递送 脂质体佐剂 PLGA缓释 病毒样颗粒 外泌体免疫调节 个性化疫苗
2026年8月19日,Moderna与默沙东联合宣布,个性化mRNA癌症疫苗intismeran autogene(mRNA-4157/V940)联合帕博利珠单抗,在III期INTerpath-001研究中达到RFS主要终点。IIb期五年随访显示复发或死亡风险降低约49%(HR=0.51),5年RFS率68.8% vs 49.1%[1]。mRNA被LNP包裹递送——LNP功不可没。但LNP真的是癌症疫苗的唯一答案吗?从脂质体到病毒样颗粒,从PLGA到外泌体,癌症疫苗的递送载体远不止一条路。
癌症疫苗五种递送载体对比全景图:LNP脂质纳米颗粒、脂质体、PLGA聚合物纳米粒、病毒样颗粒VLP和外泌体在肿瘤疫苗中的递送机制与选型框架
本文要点速览
▸ 核心问题:LNP是mRNA癌症疫苗的递送主力,但肽疫苗、蛋白疫苗、DC疫苗需要不同的递送系统
▸ 5种载体横向对比:LNP(mRNA递送效率最高)→脂质体(佐剂共递送+缓释)→PLGA(可控缓释)→VLP(天然免疫激活)→外泌体(天然免疫调节)
▸ 选型逻辑:抗原类型决定载体大类——mRNA选LNP,肽/蛋白选脂质体或PLGA,需要B细胞直接激活选VLP
▸ 供应链视角:个性化疫苗"一人一药"将上游试剂消耗从"大批量"变为"高频小批量"

一、III期破局:mRNA癌症疫苗的"LNP时刻"

2026年8月19日,Moderna与默沙东联合宣布,个性化mRNA癌症疫苗intismeran autogene(mRNA-4157/V940)联合帕博利珠单抗(Keytruda),在III期INTerpath-001研究中达到主要终点——无复发生存期(RFS)显著改善,关键次要终点无远处转移生存期(DMFS)也取得阳性结果[1]。这项试验入组1137名完全切除的IIB-IV期皮肤黑色素瘤患者。IIb期KEYNOTE-942的五年随访数据显示,联合组相比单药组,复发或死亡风险降低约49%(HR=0.51),5年RFS率分别为68.8%和49.1%[1][2]。这是全球首个成功的mRNA癌症疫苗III期试验。

mRNA-4157的给药方式是肌肉注射,剂量1 mg,每3周一次,最多9次[1]。mRNA被包裹在LNP中——递送系统保护mRNA不被核酸酶降解,帮助细胞摄取,并在内吞体中实现逃逸释放。LNP在这场胜利中扮演了关键角色。需要说明的是,截至2026年8月底,mRNA-4157仍属于在研治疗,尚未获得FDA批准上市,目前公布的仅为III期"顶线"结果[1]

LNP证明了mRNA癌症疫苗路线可行。但一个更根本的问题是:癌症疫苗的抗原类型远不止mRNA一种——肽疫苗、蛋白疫苗、DC疫苗,每种抗原的物理化学性质不同,对递送系统的要求也不同。LNP只是其中一种答案。至于LNP自身在癌症疫苗场景下的短板——静脉注射后几乎只定位于肝脏,对脾脏树突状细胞(DC)的靶向效率极低——我们下一章展开。

接下来,我们逐一拆解5种递送载体,看每种载体解决的是什么问题、适用边界在哪里。

二、LNP:主力载体的进化方向——从肝靶向到脾脏DC靶向

传统LNP在癌症疫苗中的核心短板

LNP由四种组分构成:可电离脂质、胆固醇、辅助磷脂(如DSPC)、PEG化脂质(如DMG-PEG2k)。这个配方在新冠mRNA疫苗中证明了大规模使用的安全性和有效性,也是Moderna mRNA-4157的递送基础。

但在癌症疫苗场景下,传统LNP有一个核心短板:静脉注射后几乎只定位于肝脏。原因不复杂——LNP进入血液循环后,血液中的载脂蛋白E(ApoE)迅速吸附到LNP表面,形成"蛋白冠",引导LNP通过LDL受体进入肝细胞。这套机制在预防性疫苗(肌肉注射)中问题不大,但在治疗性癌症疫苗中,研究者更希望mRNA被脾脏的树突状细胞(DC)摄取——DC是启动抗肿瘤免疫反应的关键抗原提呈细胞。

数据很直接:以Moderna疫苗配方SM-102为基准的传统LNP,DC转染率仅约2%[3]。已有的RNA-lipoplex(LPX)等DC递送平台,DC转染率也仅约6%[3]。这意味着绝大多数mRNA在肝脏被"浪费"了,真正启动免疫反应的抗原提呈严重不足。

2026年的突破:让LNP去脾脏

2026年多项研究在这一瓶颈上取得实质性突破。

中科院徐涛院士团队——大粒径低PEG-LNP(LLNP)
2026年2月,中国科学院生物物理研究所/广州实验室徐涛院士团队在Journal of Controlled Release发表研究,通过双参数联合调节——将PEG-脂质含量从标准配方的1.5%降至0.3%,总投入浓度(TIC)从1×提升至6×——制备出大粒径(约250-280 nm)、低PEG的LLNP[3]

核心数据:LLNP实现了约44%的CD11c+ DC转染率,而传统小粒径SLNP仅6%,基准MODLNP仅2%——提升数十倍。在GFP+细胞中约82%为DC,脾脏信号几乎完全集中,肝脏信号极微弱。在TC-1肿瘤模型中,5 μg剂量下100%(12/12)完全根除肿瘤,90天内无复发;治愈后小鼠再次肿瘤攻击100%排斥,证明长期免疫记忆[3]

机制上,LLNP的优势在于增强的细胞摄取(提升3-6.5倍),而非内吞体逃逸效率。LLNP通过网格蛋白介导、穴样凹陷介导及巨胞饮等多种途径进入DC,其中cDC1亚群是介导免疫反应的主力(Batf3基因敲除小鼠中CTL反应下降约75%)[3]

复旦大学邱敏团队——单组分脾脏靶向LNP(OncoLRC)
复旦大学人类表型组研究院邱敏团队在Advanced Science发表研究,走了一条更激进的简化路线。传统LNP是四组分体系,而OncoLRC仅含一种类脂分子H2T7——单组分体系[4]

核心特点:静脉注射后mRNA几乎完全在脾脏抗原呈递细胞中表达,近乎专一的脾脏靶向。脂质与mRNA重量比仅1.5:1(标准LNP典型比例为10:1),脂质用量大幅降低。通过巨胞饮作用介导脾脏递送。在B16F10-OVA冷肿瘤模型中表现出预防性抗肿瘤功效,与免疫检查点阻断(ICB)疗法联合使用时产生协同效应[4]

除了上述两项突破,脾脏/淋巴结靶向LNP还有多条技术路线在推进:

  • SORT技术(2020年):德克萨斯大学西南医学中心Daniel Siegwart团队在Nature Nanotechnology提出选择性器官靶向(SORT)LNP,通过添加阴离子SORT分子(如18PA)实现脾脏靶向。30% 18PA的SORT LNP转染了约12% B细胞、约10% T细胞和约20%巨噬细胞[11]
  • 锰佐剂脾脏靶向mRNA疫苗:中科院动物所魏妥/北京大学程强团队开发Mn@mRNA-LNP,同时递送肿瘤抗原mRNA和锰佐剂(Mn2+),激活STING信号通路,在黑色素瘤和结肠癌模型中抑制肿瘤进展[12]

LNP四组分在肿瘤疫苗中的调整逻辑

综合上述研究,LNP在癌症疫苗场景下的配方调整有一个清晰的逻辑线:

PEG-脂质:降低PEG含量有助于减少肝靶向(减少ApoE吸附介导的肝摄取),但PEG过低会影响稳定性,需要平衡。徐涛团队的0.3%是一个极端值,OncoLRC则直接去掉了PEG。

粒径:大粒径(250-280 nm)比标准粒径(约80-100 nm)更有利于DC摄取。大颗粒更容易被脾脏边缘区巨噬细胞和DC捕获,而小颗粒更容易通过肝血窦进入肝细胞。

可电离脂质:仍然是mRNA递送的核心——在酸性内吞体环境中质子化促进逃逸。但OncoLRC的H2T7类脂提示,可电离头部基团的结构设计可能同时影响组织靶向和细胞摄取机制。

组分简化:从四组分到单组分,简化配方有助于降低生产复杂度和成本,这对"一人一药"的个性化生产模式有实际意义。

LNP的进化方向很明确:从"递送到肝脏"转向"递送到免疫器官",从"保护mRNA"转向"精准激活免疫反应"。但LNP的核心优势——mRNA递送效率——在其他抗原类型(肽、蛋白)上并不适用。这时候,其他递送载体就有了用武之地。

三、脂质体:佐剂与缓释的"老将新用"

LNP解决了mRNA怎么进细胞的问题。但如果抗原不是mRNA而是一段肽,可电离脂质就帮不上忙了——肽抗原不需要"逃逸内吞体",需要的是佐剂共递送和缓慢释放。这时候,脂质体比LNP更合适。

脂质体与LNP的区别

虽然两者都是磷脂形成的封闭囊泡,但核心差异在于组分和功能定位:

传统脂质体不含可电离脂质,依赖其他融合机制(如DOPE的pH敏感型融合)进入细胞。LNP的核心创新是可电离脂质在酸性内吞体环境中质子化,促进内吞体逃逸,实现高效核酸递送。脂质体更侧重佐剂效应和缓释,LNP更侧重核酸递送效率[15]

换句话说,如果你的抗原是mRNA,LNP是首选;如果你的抗原是肽段或蛋白,需要的是佐剂共递送和缓释,脂质体反而更合适。

共递送抗原与佐剂

脂质体在癌症疫苗中的核心优势之一,是能同时包载抗原和免疫佐剂,实现共递送。

美国陆军脂质体配方(ALF)系列佐剂是典型代表。ALF含饱和磷脂、胆固醇和MPLA(单磷酰脂质A,TLR4激动剂),改进版ALFQ加入QS-21皂苷——这正是GSK带状疱疹疫苗Shingrix佐剂系统AS01的核心组合[6]。Shingrix已上市并取得商业成功,验证了脂质体佐剂在人体中的有效性和安全性。

在癌症疫苗场景中,脂质体可以将肿瘤特异性肽抗原与MPLA、QS-21等佐剂共同包载,一次注射同时实现抗原递送和免疫激活。国内研究也在优化脂质体处方工艺,将角鲨烯、MPLA和QS-21配伍构建复合佐剂多肽疫苗,皮下注射后评价免疫效果[16]

缓释depot效应

脂质体在注射部位形成药物储库(depot),实现抗原的缓慢释放,延长免疫刺激时间。这个特性对癌症疫苗尤为重要——持续的抗原暴露有助于维持T细胞应答和免疫记忆的形成,而一次性大量释放可能导致免疫耐受而非免疫激活。

脂质体癌症疫苗的临床验证

除了Shingrix对脂质体佐剂概念的验证,脂质体在肿瘤治疗中也有应用案例。脂质体包裹药物通过EPR效应(增强渗透滞留效应)在肿瘤部位积累——这是脂质体在肿瘤治疗中的经典应用[17]。在疫苗领域,AS01佐剂系统已在疟疾疫苗RTS,S和带状疱疹疫苗Shingrix中验证了临床有效性,为脂质体在癌症疫苗中的应用提供了工艺和安全性的基础。

四、聚合物纳米粒(PLGA):缓释共递送的工程化方案

脂质体的缓释靠磷脂双层的自然特性,释放速率不太好精确控制。PLGA不一样——它是一个工程化方案,通过调节聚合物组成,释放速率可以精确设定。

可控缓释:精确调节释放速率

PLGA的核心优势在于可控缓释。通过调节两个参数——乳酸/羟基乙酸比例和分子量——可以精确控制释放速率。这对癌症疫苗有实际意义:不同疫苗策略需要不同的抗原暴露模式,有的需要快速释放以激活初始免疫,有的需要持续释放以维持记忆T细胞应答。PLGA的可调性为这种差异化需求提供了工程化方案。

共包载抗原与佐剂

PLGA纳米粒可以同时包载多种抗原和佐剂。例如共包载OVA抗原和CpG(TLR9激动剂),实现抗原与佐剂的共递送[7]。PLGA纳米粒的大小和结构可模拟病原体,比可溶性抗原更高效地被DC摄取[7]

更有针对性的设计是表面偶联anti-CD205抗体靶向DC——PLGA纳米粒共包载OVA抗原和MPLA佐剂,通过CD205受体靶向DC,诱导强烈的抗原特异性IgG抗体、细胞因子分泌和记忆T细胞生成[20]。TLR7/8激动剂也可以通过PLGA共递送解决其在注射部位保留差的问题,通过皮下或肌肉注射提高DC可用性[21]

PLGA的局限

PLGA不是没有短板。降解过程中产生酸性微环境(乳酸和羟基乙酸累积),可能影响蛋白抗原的稳定性——这对肽疫苗影响较小,但对结构敏感的蛋白抗原需要关注[7]。此外,包封效率通常较低,需要工艺优化。

总体而言,PLGA在癌症疫苗中的定位是"工程化缓释平台"——FDA安全背书是最大优势,可控缓释是核心卖点,但更适合对稳定性要求不高的肽抗原场景。

五、病毒样颗粒(VLP):模拟天然病毒的免疫激活

前面三种载体——LNP、脂质体、PLGA——都是把抗原"运过去",免疫激活靠佐剂。VLP走了一条完全不同的路:它本身就是免疫激活源。

VLP的免疫激活机制

VLP的免疫激活有三个独特机制:

重复表位阵列。 VLP表面高度重复的抗原表位阵列直接激活B细胞。B细胞受体(BCR)识别重复结构后交联聚集,产生强效中和抗体——这是VLP最核心的免疫激活路径。这个机制不需要T细胞辅助即可启动B细胞应答,效率远高于可溶性单体抗原。

MHC交叉呈递。 VLP可被DC有效摄取并交叉呈递于MHC I分子,激活CD8+ T细胞。这对治疗性癌症疫苗尤为重要——抗肿瘤免疫需要CTL(细胞毒性T淋巴细胞)应答,而MHC I交叉呈递是激活CTL的关键路径。

无需佐剂。 VLP本身的病毒样结构即具有强免疫原性,部分VLP疫苗不需要额外佐剂即可产生有效免疫应答。

预防性VLP疫苗的成功先例

VLP在预防性疫苗领域已有上市验证。HPV VLP疫苗(Gardasil/Cervarix)是代表——通过表达HPV L1蛋白自组装形成VLP,诱导长期免疫记忆,安全性良好[24][25]。Cervarix使用MPLA(AS04佐剂)+VLP的组合策略,也验证了VLP与脂质体佐剂的联用可行性[26]

预防性VLP疫苗的成功提出了一个自然的问题:VLP能不能做治疗性癌症疫苗?

治疗性VLP癌症疫苗的探索

治疗性VLP癌症疫苗的逻辑不同于预防性疫苗。预防性疫苗的目标是"用VLP模拟病毒,提前训练免疫系统";治疗性疫苗的目标是"用VLP展示肿瘤抗原,激活已有的抗肿瘤免疫"。几条技术路线在探索中:

P22 VLP平台。 来源于噬菌体P22的VLP作为抗原递送纳米平台,表面加载肽抗原,在癌症免疫治疗中诱导CTL反应[27]

病毒模拟mRNA疫苗。 磷脂双层包覆蛋白-核苷酸核心(mRNA+CpG+正电荷蛋白),模拟完整病毒结构——既有VLP的重复表位阵列激活B细胞,又有mRNA的内源性抗原表达激活CTL,在荷瘤小鼠中刺激CD8+ T细胞增殖[28]

据Nature Reviews Immunology综述,VLP已从抗病毒疫苗发展到治疗性疫苗领域,包括慢性炎症、疼痛、过敏和癌症[5]。HPV VLP疫苗Gardasil系列是全球最成功的VLP疫苗之一,验证了VLP平台的商业可行性。

VLP的核心优势是"天然免疫激活"——不需要佐剂就能产生强免疫应答。但局限也很明显:VLP不适合递送mRNA(除非像病毒模拟mRNA疫苗那样特殊设计),对表达系统有依赖(大肠杆菌/酵母/哺乳动物细胞),可规模化程度受表达系统制约。

六、外泌体:天然免疫调节的"生物载体"

前面四种载体都是合成的——磷脂自组装、聚合物自组装、病毒蛋白自组装。外泌体不一样,它是细胞自己分泌的天然囊泡,自带免疫调节"工具包"。

天然归巢与免疫调节

外泌体在癌症疫苗中的独特价值来自两个特性:

天然归巢能力。 外泌体携带来源细胞的表面分子和膜蛋白,具有天然的细胞间通讯和归巢能力。DC来源的外泌体(Dexosome/DEX)携带MHC I/II分子和CD86共刺激分子——这是完整的抗原提呈"工具包",可以将抗原-MHC复合物转移给naive DC,启动抗原特异性免疫反应[29]

天然免疫调节。 肿瘤来源外泌体(TEX)携带肿瘤抗原,可以被DC摄取并交叉呈递。γ射线照射黑色素瘤细胞来源的外泌体能刺激DC成熟,促进Th1型IFN-γ+CD8+ T细胞生成[30]。肿瘤来源外泌体与α-GalCer共递送给DC,已被探索用于胶质母细胞瘤免疫治疗[31]

工程化改造方向

天然外泌体可以直接使用,也可以工程化改造。负载肝癌表位肽(hAFP158-166、hGPC3144-152)的DC来源外泌体(DEXAGNP),整合了抗原呈递、先天免疫激活和PD-L1阻断三重功能[8]。TLR-3激动剂poly(I:C)刺激DC产生的外泌体,在B16F10黑色素瘤模型中显著增强CD8+ T细胞激活,减少肿瘤生长,延长生存期[33]

临床验证进展

Dexosome已在I期和II期临床试验中验证安全性。一项I期试验纳入13例HLA-A2+非小细胞肺癌(NSCLC)患者,DC来源外泌体负载MAGE-A3/A4/A10肽,4剂每周一次,耐受良好(仅1-2级不良反应),疾病进展时间30-429+天[32]

外泌体与合成载体的互补关系

外泌体具有天然免疫调节能力,但产量和标准化是核心挑战——细胞培养、分离纯化、质控标准都远比合成载体复杂。合成载体(LNP/脂质体/PLGA)可工程化但缺乏天然生物活性。两者更可能是互补关系:外泌体可作为"天然免疫佐剂"与合成载体联用,而非替代[34]

外泌体在癌症疫苗中的定位是"天然免疫调节平台"——优势是生物相容性和免疫调节能力,局限是产量、标准化和成本。

七、一人一药:个性化癌症疫苗的试剂供应链

前面六章讲的是"怎么递送",这一章讲的是"怎么生产"——因为癌症疫苗最大的产业挑战不在实验室,而在生产模式。

Moderna的6周定制全流程

据2026年8月Journal of Clinical Oncology Oncology Advances发表的全流程论文,Moderna mRNA-4157的个性化生产流程可拆解为7步[1]

第1步:样本采集。 获取肿瘤组织(约1 mm³或20张5 μm切片,肿瘤细胞含量≥20%)和外周血(约3 mL)。
第2步:NGS测序。 从肿瘤提取DNA和RNA进行下一代测序,同时测外周血作为正常对照,识别肿瘤特异性突变。
第3步:AI新抗原筛选。 综合突变比例、RNA表达水平、蛋白序列特征和HLA结合力,从大量突变中筛选出最多34个新抗原。
第4步:mRNA序列设计与合成。 将34个新抗原编码序列串联到一条mRNA上。需要的试剂包括质粒DNA模板、T7 RNA聚合酶、修饰核苷酸和帽类似物。
第5步:LNP包裹。 将mRNA包入脂质纳米颗粒。需要的试剂包括可电离脂质、PEG化脂质、胆固醇和辅助磷脂。
第6步:质检与放行。 按GMP标准进行质量控制。
第7步:冷链运输。 冷冻小瓶加严格温控,每瓶有唯一身份标识。

从提交合格样本到成品送达临床研究中心,全程约6周。生产成功率超过99%——在已完成新抗原选择的患者中,几乎每批都能成功交付[1]

"高频小批量"对试剂供应链的根本影响

传统药物的生产模式是"一个配方生产十万瓶、百万瓶"。个性化疫苗彻底改变了这个模式——每来一个患者就重新设计序列、重新合成mRNA、重新包裹LNP、重新质检放行。每人都是新的小批次,但每一批都必须按GMP标准制造和完整质控[1]

这意味着上游试剂的消耗模式从"大批量"变为"高频小批量":

质粒DNA模板。 传统模式依赖大型不锈钢发酵罐,周期10周以上。无细胞DNA合成技术(如Touchlight公司doggybone DNA技术)2-3天即可扩大质粒规模,小型设备占地小,更适合个性化疫苗的快速交付需求[36]

T7 RNA聚合酶与修饰核苷酸。 从大规模消耗变为高频小批量消耗。近岸蛋白、诺唯赞等国产供应商已在布局mRNA合成酶和修饰核苷酸的规模化供应[9]

可电离脂质与PEG-脂质。 同样从大批量变为高频小批量。键凯科技、深信生物等国内企业在脂质原料的规模化供应方面持续投入[9]

纯化填料。 每批次独立纯化,对层析填料的批次一致性和供应链稳定性提出更高要求。

成本估算
据投行估算,mRNA-4157每位患者的成本约47.5万美元(约318万人民币)[35]。这个成本结构意味着,随着个性化疫苗从III期走向上市,上游试剂供应链的效率提升和成本下降将是产业化的关键瓶颈。(注:据投行测算,非官方披露数据,仅供参考)

国内mRNA癌症疫苗管线布局

国内已有多家企业在mRNA癌症疫苗领域布局,包括恒瑞医药、石药集团、云顶新耀、威斯津生物、新合生物等,处于不同早期临床阶段[10]。云顶新耀的EVM16在AACR 2026上公布了首次人体数据,展现良好安全性、较强免疫原性与初步疗效。威斯津生物有两项创新成果入选2026 ASCO[38]。新合生物长期押注mRNA肿瘤疫苗,临床数据显示出积极的免疫原性信号[39]

这些管线的推进,意味着国内对mRNA合成试剂和LNP脂质原料的需求将持续增长。

八、选型决策框架

5种递送载体各有定位,没有"最好的载体",只有"最合适的载体"。选型的核心逻辑是匹配抗原类型和应用场景。

维度 LNP 脂质体 PLGA VLP 外泌体
最适抗原类型 mRNA 肽/蛋白 肽/蛋白/佐剂 蛋白(自组装) 多种(天然cargo)
靶向能力 可工程化(脾脏/淋巴结靶向突破中) 低(依赖EPR) 可表面修饰(anti-CD205等) 天然B细胞靶向 天然归巢(可工程化)
佐剂效应 内在佐剂(mRNA激活TLR) 强(共递送MPLA/QS-21) 中(可共载佐剂) 强(重复表位阵列) 天然免疫调节
可规模化 高(已有GMP产线) 高(成熟工艺) 中高(FDA批准辅料) 中(表达系统依赖) 低(产量/标准化挑战)
成本 中高(脂质原料贵) 低(PLGA便宜) 中高 高(培养+纯化)
临床验证 III期成功(mRNA-4157) 上市(Shingrix/AS01) 上市(多种微球制剂) 上市(Gardasil) I/II期(Dexosome)

选型的三条经验判断:

抗原类型决定载体大类。 mRNA抗原→LNP(递送效率最高);肽/蛋白抗原→脂质体或PLGA(佐剂共递送+缓释);需要B细胞直接激活→VLP;需要天然免疫调节→外泌体。

靶向需求决定载体优化方向。 需要脾脏DC靶向→大粒径低PEG-LNP或单组分脾脏靶向LNP;需要淋巴结靶向→SORT-LNP或淋巴结靶向LNP(仍在突破中);不需要特定靶向→脂质体或PLGA(depot效应+缓释)。

产业化阶段决定载体可行性。 早期研究→所有载体均可探索;临床转化→优先选择已有GMP产线和临床验证的载体(LNP、脂质体、PLGA);个性化生产→优先选择组分简单、工艺可标准化的载体(LNP四组分或单组分体系)。

九、FAQ

▸ LNP和脂质体在癌症疫苗中的核心区别是什么?
LNP含可电离脂质,在酸性内吞体中质子化促进逃逸,核心优势是mRNA递送效率。脂质体不含可电离脂质,核心优势是佐剂共递送(如MPLA、QS-21)和缓释depot效应。抗原是mRNA→选LNP;抗原是肽或蛋白、需要佐剂共递送→选脂质体。
▸ 个性化癌症疫苗为什么不用VLP?
VLP通过表达病毒结构蛋白自组装形成颗粒,表面展示的是该蛋白自身的重复表位。个性化疫苗需要展示的是每位患者独有的肿瘤新抗原——这些新抗原因人而异,且数量多(Moderna的mRNA-4157每位患者最多34个),不适合用VLP的自组装模式。VLP更适合"一个抗原、所有人通用"的预防性疫苗场景。
▸ PLGA包裹mRNA可行吗?
技术上可行,但不是最优选择。PLGA降解产生酸性微环境,可能影响mRNA稳定性。mRNA递送的首选仍是LNP——可电离脂质提供内吞体逃逸能力,这是PLGA不具备的。PLGA更适合包裹肽抗原或蛋白抗原,与佐剂共递送。
▸ 外泌体能否替代LNP?
目前不能。外泌体的核心挑战是产量和标准化——细胞培养、分离纯化、质控标准远比合成载体复杂。Dexosome的I/II期临床试验验证了安全性,但距离规模化生产还有距离。更可能的路径是外泌体与合成载体联用——外泌体提供天然免疫调节,合成载体提供可工程化的抗原递送。

冰合试剂提供LNP配方所需的可电离脂质、PEG化磷脂、胆固醇及辅助磷脂等脂质原料,适用于mRNA癌症疫苗递送体系的配方筛选与工艺优化。可电离脂质产品分类 | PEG化磷脂产品分类 | 辅助脂质产品分类

参考文献
[1] 6周定制个体化癌症疫苗——莫德纳mRNA-4157全流程揭秘. JCO Oncology Advances. 2026.(注:截至2026年8月底,mRNA-4157尚未获FDA批准上市,III期完整数据尚未正式披露)
[2] mRNA肿瘤疫苗III期临床成功,关注国内映射标的. 2026-08-19. Moderna/默沙东官方公告及多家媒体报道.
[3] Xu X, An J, Bai D, et al. Large and low-PEG lipid nanoparticles enable efficient dendritic cell targeting for potent mRNA cancer vaccines. J Control Release. 2026 Feb 2:114680.
[4] 复旦大学邱敏团队开发单组分LNP递送系统用于mRNA癌症疫苗. Advanced Science. 2025. DOI:10.1002/advs.202512535.
[5] Virus-like particles: from antiviral to therapeutic vaccines. Nature Reviews Immunology. 2023.
[6] Army Liposome Formulation (ALF) family of vaccine adjuvants. PubMed. PMID:32228108.
[7] PLGA-based particulate vaccine delivery systems for immunotherapy of cancer. ResearchGate.
[8] Immune-modified exosome vaccine loaded with liver cancer epitope peptides. J Nanobiotechnology. 2026. DOI:10.1186/s12951-026-04166-y.
[9] mRNA产业链上中游企业深度梳理. 2026.
[10] Moderna的"mRNA个性化疫苗"首度成功,中国创新药也在排队中. 2026-08-21.
[11] Selective organ targeting (SORT) LNP. Nature Nanotechnology. 2020.(注:SORT技术由Daniel Siegwart团队提出)
[12] 中科院动物所魏妥/北京大学程强团队ACS Nano:脾脏靶向mRNA疫苗. 2024.
[13] Lung-selective mRNA delivery of synthetic lipid nanoparticles. PNAS. 2022. PMID:35173043.
[14] 徐巧兵团队开发出淋巴结靶向的LNP-mRNA癌症疫苗. 转化医学网.
[15] 脂质体药物递送系统综述.(注:脂质体概念由Alec Bangham于1965年提出)
[16] 脂质体多肽疫苗的处方工艺优化及免疫效果评价. 万方数据.
[17] 脂质体在肿瘤治疗中的EPR效应应用.
[18] PLGA微球制剂综述(艾塞那肽微球、亮丙瑞林微球等已上市产品).
[19] AITRIZ:人工智能时代的创新法则.
[20] Potentiating antigen specific immune response by targeted delivery of PLGA-based model cancer vaccine. PubMed. PMID:30477303.
[21] PLGA nanoparticles as vaccine delivery platform for TLR7/8 agonist-based cancer vaccine. ScienceDirect.
[22] Targeting dendritic cells with nano-particulate PLGA cancer vaccine formulations. Adv Drug Deliv Rev. 2011. PMID:21679733.
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[34] Potential application of exosomes in vaccine development and delivery. Springer. 2021.
[35] 个性化mRNA癌症疫苗成本估算.(注:据投行测算,非官方披露数据,仅供参考)
[36] DNA合成技术加速个性化肿瘤疫苗制备. 医药魔方.(注:Touchlight doggybone DNA技术)
[37] 云顶新耀的mRNA肿瘤疫苗. 2026.
[38] 2026 ASCO:威斯津生物两项创新成果入选.
[39] 新合生物9年押注mRNA肿瘤疫苗.

本文为行业分析,所述数据均来自公开学术文献与监管机构公开记录,仅供科研学习参考,不构成商业应用承诺。
文中试剂仅限实验室研究使用,不用于人体临床、诊断或治疗。
「冰合试剂」为单体(重庆)生物科技有限公司注册商标,本文由单体(重庆)生物科技有限公司发布。

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